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经典三级视频在线观看 用可溶性*化抗原进行选择

时间:2012-12-25阅读:219
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1.使用厂商*的试剂盒对抗原进行*化。如果用DTT洗脱,可以采用NHS—SS*。
2.用2%MPBS封闭1.5ml微量离心管,室温1小时;然后,弃去封闭缓冲液。
3.在1个1.5ml微量离心管中,用2%MPBS封闭100ul链霉亲和素磁珠,室温1小时。封闭后,用磁性试管架将磁珠吸向一侧,收集磁珠。弃去缓冲液。
4,预先削减文库中结合链霉亲和素的抗体:在2%MPBS中将1012~1013个噬菌体(首轮选择时为1013个,其后选择为1012个)与100ul链霉亲和素磁珠孵育1小时,反应体积为lml。用磁性试管架将磁珠拉向一侧,收集噬菌体抗体并弃去磁珠。
5.在已封闭处理的试管中,加入lml预先削减的噬菌体抗体,再加入*化抗原(100~500nmol/L)。转台上转动,室温孵育1小时。
6.将已封闭的100ul链霉亲和素磁珠加入试管,并在转台上室温孵育15分钟。将试管放在磁架30秒。磁珠将移向磁铁。
7.抽吸试管,让磁珠留在微量离心管侧面。是用1个200ul吸头套在巴氏滴管上,再接到真空源上进行抽吸操作。用PBS/Tween洗涤磁珠7次(每次lml),接着用MPBS洗涤2次以及用PBS洗涤1次。每隔一次洗涤后,将磁珠转移至1个新的1.5m1试管内,将有助于有效洗涤。
8.加入lmll00mmol/L三乙基胺洗脱噬菌体,给试管加盖;并来回转动8分钟。用磁架将磁珠拉向一侧,并将溶液转移到1个含有500ul lmol/L Tris(pH 7.4)的Eppendorf管中。
9.继续进行步骤7前面的流程来准备次轮选择。根据洗脱的噬菌体滴度情况,次轮选择所用抗原浓度可以降低为原来的1/11。

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